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Western Blot檢測服務的實驗流程

更新時間:2023-02-07      瀏覽次數:728

Western Blot檢測服務的實驗流程


實驗流程:

蛋白提取-制膠-電泳-轉膜-封閉-一抗孵育-二抗孵育-化學發光-結果分析;

送樣運輸要求:新鮮組織,100mg以上,干冰運輸。細胞量為5*10^6以上,收集細胞沉淀,干冰運輸。



預實驗的內容如下:

1)確定一抗的稀釋比例和孵育時間;

2)選擇合適的封閉液及封閉時間;

3)調節合適的上樣量,使內參條帶灰度值趨于一致。


Western blot結果及數據提供(提供以下兩種圖片,做之前需要和銷售確認好需要哪種)







內參蛋白和目的蛋白曝光膠片各一張,可提供掃描圖,實驗報告,包括整個試驗流程所涉及的實驗數據和實驗步驟。如需進行蛋白純化服務,將提供檢測報告



服務內容:


從動物細胞、人或者動物組織、細菌、植物樣品中提取蛋白樣品。


對蛋白樣品進行半定量分析


western檢測


電泳:聚丙烯酰氨凝膠電泳分離蛋白樣品


轉膜:濕轉


抗體孵育:使用抗體檢測膜上的特定蛋白


Western blot樣本要求


客戶需新鮮或正確保存的蛋白樣品, 檢測目的蛋白的一抗(或由本公司代購)。樣品要求為:


1、裂解樣品總蛋白量>500ug/樣品。


2、細胞樣品總蛋白濃度>1mg/ml。


3、組織樣品總蛋白濃度>10-15mg/ml。


注意事項:


對于細胞和一些微生物樣本,可去除培養基后,加裂解液制備蛋白樣品;若未能及時制備蛋白樣品,去除培養基后,將其液氮速凍后保存于-80℃(約一個月)或保存于液氮(約三個月);運輸時,樣本(含培養基)加冰袋,保持培養基低溫但不結冰,或者樣本去除培養基后加干冰。


提取蛋白的樣本最好是新鮮的,同時,以盡可能地提取有效蛋白為準則;樣本需避免反復凍融。


所有樣本均不建議保存于-20℃。-20℃時,組織、細胞內的水會結晶,細胞活性和組織微觀結構會受到傷害,生物大分子受到組織、細胞內多種因素的影響,穩定性可能會明顯降低,但部分純化的大分子可以短中期保存。


 -80℃保存條件時,樣本內的生化反應減弱,可中期保持組織細胞內大分子的穩定性,短期保持細胞活性和組織微觀結構;


液氮保存可長期保持組織細胞內大分子的穩定性、細胞活性和組織微觀結構;液氮保存時,盛裝樣本的Ep管管口需用封口膜密封,防止管口爆開造成交叉污染。


Western Blot檢測服務的實驗流程



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